欢迎来到我们的流式细胞术系列培训。我们首先介绍一些基本知识,比如了解您的细胞仪,接着介绍一些细节,最后介绍如何充分利用这项强大的技术。
在流式细胞术培训的第 2 部分,我们将为您介绍一些基本步骤,如样本制备、对照设置、直接染色与间接染色的选择以及细胞内染色操作。
2.1 样本制备
2.2 对照
2.3 直接染色与间接染色
2.4 细胞内染色
样本制备对您的数据质量影响极大。观看我们的短视频,了解为何制备单细胞悬浮液对流式细胞术而言如此重要,以及如何操作制备单细胞悬浮液。
以下是关于流式细胞术样本制备的一些重要提示:
• 最大限度地减少非特异性结合 - 使用 BSA 或 FBS 作为封闭剂。
• 最大限度地减少抗体与 Fc 受体的结合 - 在样本染色期间加入 10% 同源血清或 5 mg/mL 未标记的 IgG。
• 如果研究细胞内标志物,透化细胞膜 - 使用低浓度的非离子洗涤剂(最高 0.1%)。
• 如果使用活细胞,防止细胞表面蛋白的内化 - 所有步骤在冰上进行,使用前在 4℃ 下冷藏试剂。
• 防止细胞损伤 - 避免出现气泡、剧烈涡旋、更换缓冲液时吸出全部溶液以及过度离心。
• 防止细胞死亡引起的结块 - 添加 DNAse I(25 - 50 μg/mL)和 5 mM MgCl2。
• 防止阳离子依赖型细胞粘附 - 使用不含 Ca2+/Mg2+的缓冲液。您最多可以添加 5 mM EDTA,以进一步防止细胞粘附。在此情况下,您应该使用 BSA(0.1%-1%)或经透析的 FBS(1%-5%),因为未透析的 FBS 会取代 Ca2+/Mg2+。
• 使用单细胞悬液 - 如果可能,使用细胞滤网过滤器过滤样本。如果没有,可以使用尼龙网筛,但这样可能会损失细胞。
• 防止堵塞系统 - 将细胞浓度维持在合理的浓度内 (1 x 106–10 x 106 个细胞/mL).
合适的对照可以帮助您区分真假结果并发现方法中存在的潜在问题。因此,您必须花时间正确设置对照。
设计实验时,请确保您在以下步骤加入了合适的对照:
细胞活性
由于非特异性结合和自发荧光水平增加,死细胞可能产生假信号,导致错误的结论。
• 使用活性标志物(如 7-氨基放线菌素 D(7-AAD)、碘化丙啶、核绿 DCS1 或 DRAQ7™)来区分活细胞群和死细胞群。
自发荧光
天然存在的细胞组分如 NADPH 和黄素,可以发出可能掩盖抗原特异性信号的荧光。
• 使用等分的未染色细胞来控制自发荧光。您还可以使用未染色细胞来定义阴性细胞群、细胞大小和粒度。
光谱重叠
可以在不同的通道中检测到一个荧光基团发射出的荧光。这种现象会严重影响给定通道的测量结果。
• 使用荧光减一(FMO)对照测定给定通道中溢出的量度。这里,除了正在检测的荧光偶联物,用所有其他荧光偶联物对样本进行染色,突出其他荧光偶联物对未标记通道信号的影响。
• FMO 对照是多色实验的基础,因为它能确保正确的门控,并仅选择实验样本中的染色细胞进行分析。
• 浏览我们详细的 补偿指南,了解更多相关信息。
不需要的抗体结合
从广义上来说,不需要的抗体结合包括所有影响数据正确解读的抗体结合。当抗体与靶外表位或 Fc 受体结合(但不属于受体-配体相互作用),或通过其偶联的荧光基团与某一表位或抗原结合时,会发生不需要的抗体结合。
• 使用阴性对照和同型对照可以解释这一点。
• 阴性对照应该是不表达目标抗原的细胞群;如果可能,请使用基因敲除细胞。该样本应与研究用细胞群采用相同的实验条件。使用阴性对照来设置门控区域并从阴性细胞中区分阳性细胞。
• 同型对照用于确定由非特异性抗体结合引起的背景。同型对照使用与一抗同型的抗体,但只能和研究细胞中缺失的的抗原发生特异性结合。使用同型对照可以确定由非特异性抗体结合引起的背景。但是不能区分阳性细胞和阴性细胞或设置阳性门控区域。
请参阅我们的完整推荐对照列表。
直接和间接实质上是指检测分子的位置,即荧光基团。对于直接流式细胞术,荧光基团直接与一抗偶联。在间接流式细胞术中,荧光基团与结合一抗的二抗偶联 —— 这样可以通过额外的方案步骤来扩增信号。这个视频您介绍了直接与间接流式细胞术实验方案的主要步骤。
虽然流式细胞术常用于检测细胞表面标志物,如 CD 蛋白,但也可用于检测细胞内蛋白,如转录因子。要做到这一点,您需要在染色细胞之前使用固定和透化步骤。
如果需要了解更多信息,请参考我们的细胞内染色实验方案。
第 2 部分结束后,您应该很好地了解了:
• 样本制备的关键点
• 各种类型的对照及其操作方法
• 直接染色与间接染色
• 检测细胞内蛋白时应如何修改流式细胞术实验方案
在第 3 部分,我们将为您介绍流式细胞术的实验设置、补偿及数据分析。
现在开始学习第 3 部分吧!